细胞窥探者:寻找最迷你“快递小哥”-资讯-知识分子

细胞窥探者:寻找最迷你“快递小哥”

2019/11/12
导读
追随自然的挑战。

如果把一个神经元细胞想成中国地图的话,那么将物品从广州运到内蒙古的“快递小哥”是谁呢?迈克尔·希茨和罗纳德·韦尔试图在乌贼身上寻找答案,然而那一年,由于全球经历了严重的厄尔尼诺现象,美国西海岸的乌贼全溜了……

Kinesin,细胞内的“快递小哥”(图源:The Inner Life of the Cell (2006) Harvard Biology)


撰文 | 黄宇翔

编辑 | 万朵 


直到今天,不断地迎接意料之外的实验结果的挑战依然令我感到兴奋,并且是推动我在科学事业上不断进取的最大动力。


迈克尔·希茨(细胞生物学研究者,力学生物学和生物力学先驱者)[1]


1946年12月,刚刚从美国海军退役的大卫·希茨(David Sheetz)迎来了自己第一个孩子的降生,为他取名为迈克尔·希茨(Michael Sheetz)。退役后的大卫随后在内布拉斯加大学取得化学博士学位,并在大名鼎鼎的陶氏化学公司的研发部门成功找到了一份工作,随后举家搬到陶氏公司的总部——位于美国密歇根州的米德兰(Midland)。[2]


迈克尔在米德兰度过了他快乐的童年时光。这座只有四万人口的小城,蕴藏着浓郁的化学氛围——研发出从盐水中高效萃取出溴的化学家赫伯特·陶(Herbert  Dow)于1897年在米德兰这座小城创立了陶氏公司。这家最初以经营漂白剂和溴化钾为主要业务的公司在二十世纪上半叶蓬勃发展,到了五十年代已经是一家年销售额达10亿美元的化工巨头。由于大量米德兰的居民都是陶氏公司的雇员,因此这座小城也被称作“陶氏化工之城”(A Dow Chemical Town)。


“大家都期望陶氏公司化学家们的孩子在未来都能成长为比他们父辈更为优秀的化学家,我当时深受这种思想的影响。”迈克尔回忆自己的童年时说。[3]


结缘生物化学研究


1964年,高中毕业的迈克尔选择到离家140英里的阿尔比恩文理学院(Albion College)就读。这家文理学院的化学系不错,而且在迈克尔看来更重要的是“在这里我能获得更多老师一对一的指导,能有机会做自己独立的项目”。[3]


在阿尔比恩文理学院,迈克尔打下了扎实的数理基础,并对基础物理学和化学研究产生了浓厚的兴趣,但是身为化学家的父亲大卫却希望大儿子能打开视野。


“老爸尝试说服我能治病救人的研究比物理或者化学的基础理论更有价值,”迈克尔在2012年拉斯克奖颁奖典礼的致辞中回忆道,“为了验证他的观点,我去医院做了几个月的夜间护工,很快就意识到在当时许多治疗方法都遵循着‘不造成伤害’(do no harm)的原则,其根源是我们那时对于人体的生物化学机制了解还非常的匮乏。”


(图源:laskerfoundation.org)

1967年,在参加了美国阿贡国家实验室(Argonne National Laboratory)暑期科研项目后,迈克尔正式确定自己的志向是成为一名生物化学家,并于1968年被加州理工学院(California Institute of Technology,Caltech)研究生项目录取。


在加州理工学院,迈克尔在生物物理化学家Sunney Chan(陈长谦)的指导下用核磁共振影像方法对细胞膜的性质进行研究。然而,囿于技术手段的局限,迈克尔在研究生期间仅仅能在相对剧烈的条件下(如高温变性)检测到细胞膜的核磁共振信号,而无法对细胞膜更细微的结构进行观测。[4-6]


1972年,迈克尔获得博士学位,前往旧金山大学圣地亚哥分校(University of California, San Diego, UCSD)的Jon Singer实验室进行博后研究。

 

初出茅庐


在迈克尔来到Jon Singer实验室的70年代,人们关于细胞膜生物化学的知识还非常缺乏。迈克尔和导师Jon Singer针对“细胞膜双分子结构中内膜富含阴离子脂质”的这一事实提出了一个他们称之为“双层偶联”(bilayer couple)的假设:阴离子内膜会吸引一些阳离子药物,进而通过影响膜结构改变细胞的形状。通过简洁的功能学和电镜实验,迈克尔作出了自己在学术界第一个重要的贡献,推动了“双层偶联”模型的发展。[7]


1974年,迈克尔在康涅狄格大学(University of Connecticut, UCONN)建立了自己的独立实验室,继续跟进博后期间在红细胞膜方面的工作,试图探究细胞膜“双层偶联”的生物化学机制。


红细胞膜的膜蛋白扩散速度比其他细胞类型的膜蛋白扩散速度要慢约100倍,而迈克尔和他在康涅狄格大学的合作者Dennis Koppel与Mel Schindler发现,珠蛋白(一种膜骨架蛋白)突变的小鼠红细胞膜蛋白扩散速度变得与其他细胞的膜蛋白一样快了。基于此,他们提出珠蛋白在细胞膜表面形成局部的“珊瑚样结构”,能允许膜蛋白局部的扩散,但却阻止其长距离扩散。这一发现为迈克尔带来了他在《自然》杂志发表的第一篇论文,也让他在学术界开始小有名气。[8]


就在这个时候,迈克尔选择到斯坦福大学詹姆斯·斯普迪赫(James Spudich)的实验室开启一段改变了他职业生涯的学术休假。

 

黏菌VS丽藻


当时詹姆斯·斯普迪赫的研究兴趣在于通过体外重组得到肌球蛋白运动的过程。


詹姆斯仅仅比迈克尔年长四岁,在一个克罗地亚移民家庭长大,研究生期间在斯坦福大学亚瑟·科恩伯格(Arthur Kornberg)(1959年因发现DNA聚合酶获诺贝尔生理或医学奖)手下接受了严格的生物化学训练。


博士毕业后,他留在斯坦福大学查理·亚塔夫斯基(Charley Yanofsky)实验室做了一段短期博后,运用遗传学手段研究大肠杆菌色氨酸操作子,随后来到英国剑桥大学的Hugh Huxley实验室研究肌球蛋白运动的机制。Hugh Huxley基于X射线衍射与电镜实验结果为提出解释肌肉如何收缩舒张的“肌动滑动”模型作出了重要贡献。詹姆斯在Hugh Huxley实验室的博后工作提出原肌球蛋白(tropomyosin)和肌钙蛋白(Troponin)通过空间位阻抑制肌动蛋白(actin)与肌球蛋白(myosin)的相互结合。[9-12]


在1970年代,对于肌动滑动模型最大的挑战是细胞内存在各种可能与肌动蛋白结合的蛋白,研究者们无法清晰地阐明ATP水解引发机械运动的分子机制。因此,在加州大学旧金山分校(University of California, San Francisco, UCSF)建立独立实验室的詹姆斯希望能在体外重现肌动蛋白与肌球蛋白相互作用的生理过程(詹姆斯后于1977年搬到了斯坦福大学结构生物学系)。


为了实现这个目标,詹姆斯率领团队在十年的时间里尝试了包括粗糙脉孢菌(Neurospora crassa)、酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、黏菌(Physarum polycephalum)、盘基网柄菌(Dictyostelium discoideum)等在内的许多体系。


在最初的尝试中,黏菌是最被詹姆斯寄予厚望的实验体系,詹姆斯的博后玛格利特·克拉克(Margaret Clarke)成功从黏菌中纯化出了肌球蛋白,并且黏菌的肌动蛋白与细胞膜紧密相连,使得研究者可以相对容易地分离出结合聚苯乙烯珠子的肌动蛋白。詹姆斯团队试图通过珠子将肌动蛋白固定在玻璃上,然后向其中加入结合了肌球蛋白的珠子和提供能量的ATP,希望能观测到肌球蛋白-珠子在肌动蛋白上的定向移动。[13-15]


遗憾的是,直到1982年开始学术休假的迈克尔加入团队的时候,詹姆斯团队依然没有成功建立起这一体外重组体系。


人们事后分析认为,詹姆斯团队前期失败的原因很可能是固定在玻璃板上的肌动蛋白朝向各异,导致只能观察到肌球蛋白-珠子的一些无规则运动。


迈克尔尝试利用丽藻(Nitella axillaris)建立詹姆斯团队长期希望实现的体外重组体系。


结构生物学家施一公在给清华生科院的本科生上课时曾经说过,实验所选用的体系之于生物学研究,正如引擎之于汽车,体系如果用对了,往往能达到事半功倍的效果。


对于建立体外肌动滑动模型这一特定的生物学问题,迈克尔幸运地选择了合适的实验体系:丽藻的大节间细胞(giant internodal cell),这种细胞的叶绿体紧紧贴在细胞壁上,成排的肌动蛋白整齐地依附在叶绿体上(每排叶绿体平均含有5排肌动蛋白),而光学显微镜下看到的每排肌动蛋白丝含有上百个肌动蛋白分子,排列得宛如阅兵的方队一般整齐,仿佛只等待着研究者去检阅。


通过显微镜,迈克尔见证了这一细胞内的生命奇观,并将其应用于回答自己的科学问题上——神奇至极,这一次,詹姆斯团队第一次在体外体系看到了肌球蛋白-珠子在肌动蛋白上的定向移动![16]


1983年5月5日,迈克尔和詹姆斯在《自然》杂志与全世界分享他们成功建立出重组肌动滑动体系的喜悦。


这场科学的胜利,丽藻功不可没。                


丽藻节间细胞:完美的体系!(图源:参考文献 16)


乌贼,厄尔尼诺以及驱动蛋白的发现


1982年迈克尔利用丽藻成功建立体外重组体系的消息,震动了他们实验室楼下的一位23岁的研究生,罗纳德·韦尔(Ronald Vale)。


罗纳德此时在Eric Shooter教授的指导下研究神经生长因子如何激活神经生长因子受体的生物化学机制。他在研究中不禁思考:对于神经元而言,在树突附近的信号激活是如何将特定的物质从胞体(神经元的细胞核)“远行千里”(对于细胞而言的确如此!)运输到轴突的末端呢?如果把一个神经元细胞想成中国地图的话,那么那个将物品广州运到内蒙古的“快递员”是谁呢?[17,18]


罗纳德立刻想到,迈克尔利用丽藻细胞揭示的机制在神经元中可能同样适用——即神经元中快递运输的“铁路”就是肌动蛋白,肌球蛋白就是细胞中勤勉的“快递小哥”!


激动的罗纳德立刻找到了楼上的迈克尔,想同他一起揭晓神经元中“快递传输”的分子机制。


这一次,他们所选用的研究体系是为现代生理学立下过汗马功劳的乌贼巨大轴突。


这一年罗纳德23岁,迈克尔36岁。下面就以小罗和小麦称呼他俩吧。


天公作美,就在同一年,伍兹霍尔海洋研究所(Woods Hole Marine Biological Laboratory)的Robert Allen和Shinya Inoue独立地开发出能将显微镜图像呈现在电子屏幕的技术,大大解放了研究者观察记录的负担。并且Robert Allen团队用此技术成功地观察到乌贼巨大轴突中显著的轴浆运输过程。[19-21]


经过讨论,小罗和小麦设计了如下实验:他们计划将丽藻模型依葫芦画瓢,将乌贼巨大轴突的肌动蛋白分离出来,加入肌球蛋白-珠子,期望能观察到珠子的定向移动。


怀着激动的心情,小罗向隶属于斯坦福大学海洋实验室的霍普金斯海洋监测站(Hopkins Marine Station)打电话请求他们从海里打捞一些乌贼作为实验材料,对方爽快地答应了。


经过亿万年演化形成的胞内物质运输的分子机制,即将在人类面前被揭晓!

 

天将降大任于斯人之前,总是要先制造一些波澜。


小罗和小麦就算是天选之子,也不能够例外。


距小罗给霍普金斯海洋监测站打电话过去了几个月时间,他们始终没有收到对方寄来的乌贼,也没有收到任何电话通知。


苦苦等米下锅的小罗终于忍不住了,于是在1983年的6月拨通了海洋监测站的电话。


“我几个月前曾经请求过请你们帮忙捕捞一些乌贼,请问你们不会是忘记了吧?”


“没有呀!可是我们今年确确实实捕捉不到乌贼。”


这到底是怎么回事呢?乌贼怎么会突然抓不到了呢?


关注全球气象变化的读者朋友们可能知道,1983年全球经历了严重的厄尔尼诺现象,后果之一就是加州西海岸的海洋温度上升,导致乌贼离开海岸到温度更低的海域,该年度乌贼捕捞量呈现断崖式下跌![21]




加州乌贼捕捞量在1983年由于厄尔尼诺现象呈断崖式下跌。(图源:参考文献 22)


巧妇难为无米之炊,没有实验材料,这实验还怎么做呀?

  

小罗和小麦执着地希望能用实验检测自己的想法。既然加州的西海岸今年捕不到乌贼,那就到有乌贼的地方去做实验。


于是在1983年的夏天,他俩来到了位于东海岸的伍兹霍尔海洋研究所。


刚刚抵达伍兹霍尔海洋研究所,翻开最新一期《自然》杂志的两人都感到仿佛有一块冰滑入了自己的胃里:英国MRC实验室的研究者,报道了几乎与他们计划中完全相同的实验,只不过所用的实验材料不是乌贼,而是螃蟹。[23]


还没来得及搬砖就被人在《自然》上抢发了?(图源:参考文献 23)


刚刚千里迢迢从西海岸来到东海岸,还没开始动手就发现自己设计的实验已经被其他人先一步在《自然》杂志抢发了。


小罗和小麦的心情在这一天跌落到了谷底。难道就此收拾行李打道回府吗?


仔细阅读了英国团队的这项研究后,他们发现此研究所使用的珠子与他们实验设计的不同,是不结合肌球蛋白的塑料珠,并且也没有对所观察到的不含有肌球蛋白结合的珠子运动从机制上给出明确的解释。也就是说,现在开始在乌贼的体系下用肌球蛋白-珠子做实验追赶进度,依然很有价值。


经过了一番折腾,小罗和小麦终于做了他们在几个月前计划的实验。但实验的结果却令他们大跌眼镜:被寄予厚望的肌球蛋白-珠子实验组没有表现出定向的移动,而没有结合肌球蛋白,被用作阴性对照的珠子却表现出定向的移动!



令人费解的结果(图源:参考文献 24)


面对如此费解的结果,聪明如小罗和小麦也感到一筹莫展。


他们重新回顾了他们的假设模型,仔细思索自己的实验设计哪里可能存在问题。


聪明的读者朋友们也许已经发现了,他们假设自己从乌贼巨大轴突分离出的纤维束的主要成分是肌动蛋白,因此预测肌球蛋白-珠子能与之结合进而在纤维束上作定向运动。但假若这些纤维束的成分不是肌动蛋白呢?


伍兹霍尔海洋研究所的Bruce Schnapp和Thomas Reese给予了小罗和小麦很大的帮助。为了鉴定小罗和小麦分离出的纤维束是否为肌动蛋白,他们进行了电镜成像实验。实验结果清晰地显示——这些纤维束根本不是肌动蛋白的结构,而很可能是微管蛋白![25]


这一结果令小罗和小麦激动异常:纤维束是微管蛋白!这是否意味着在乌贼轴浆运输中存在一套全新的分子机制?


他们在逐步走近自然的真相。


小罗和小麦从乌贼巨大轴突分离出的“肌动蛋白”未必是肌动蛋白,而实际是微管蛋白。(图源:参考文献 25)


小麦,Thomas Reese,Bruce Schnapp和长发的小罗。(图源:参考文献 26)

 

1983年的8月,小罗和小麦试图在体外重组出微管蛋白介导的轴浆运输过程。


他们将纯化出的乌贼微管蛋白、细胞器组分、ATP加在一起,没有观察到轴浆运输;


他们将纯化出的乌贼微管蛋白、细胞器组分、ATP、细胞质基质中的水溶性组分加在一起——奇迹发生了,细胞器囊泡在玻璃片上有序地移动起来![27]


这意味着,细胞质基质水溶性组分中包含一种与肌球蛋白功能类似的全新分子马达。


接下来的工作重点,就是希望用生化的手段从细胞质基质水溶性组分中包含的上百个蛋白分子中找出那一个全新的分子马达。


伍兹霍尔海洋研究所的夏天熙熙攘攘,十分热闹。到了冬天,这里就变得如同修道院一般肃穆寂寥。


1983-1984年的这个冬天,就在安静的伍兹霍尔海洋研究所,乌贼巨大轴突的细胞质基质水溶性组分通过了一个个柱子被逐步分离成单一组分。终于,在经过一个羟基磷灰石层析柱的洗脱之后,能引发细胞器在微管蛋白上运动的纯净组分终于现出了庐山真面目:聚丙烯酰胺电泳图上清晰的两个条带:大的在110kDa附近,小的在65kDa附近。[28]


千呼万唤始出来,驱动蛋白(Kinesin)就此从人类知识盲区的迷雾中露出了它的神秘面庞。


12年以后,已经是UCSF药理系主任的罗纳德解析了驱动蛋白的晶体结构:包含两条重链和两条轻链。重链对应的就是他当初在电泳胶图上看到的100kDa大小的条带;轻链对应的则是那条65kDa左右的条带。[29]


驱动蛋白后续被研究者发现是一类非常大的蛋白超家族,在众多细胞生物学事件和疾病过程中发挥关键作用。[30]


2006年,驱动蛋白这位细胞中的“快递小哥”拖动细胞中“快递物件”的视频被哈佛大学的研究者做成了生动的动画,成为了现代细胞生物学的标志。


笔者在高一时第一次看到这个视频,立刻被细胞内部的美所震惊,对生物学研究兴趣大增,如今在接受细胞生物学博士研究生的科研训练。



驱动蛋白家族成员众多(图源:参考文献 30)


(图源:The Inner Life of the Cell (2006) Harvard Biology)

 

新的征程


光阴荏苒,当年意气风发的小麦如今已经年逾古稀。但依然奋战在科研一线。不同于专注阐释驱动蛋白结构和功能的罗纳德,迈克尔在包含囊泡内吞过程中的膜张力变化、整合素感受蛋白互作张力在内的多个领域都有涉猎,其中对于生物力学的关注是他几十年来的一条研究主线。[31-34]


在发现驱动蛋白后不久,迈克尔·希茨将实验室搬到了圣路易斯的华盛顿大学,随后又来到杜克大学医学院担任系主任。他于1990年起受聘哥伦比亚大学讲席教授。2009年,他在新加坡国立大学牵头建立了生物力学研究所并任教授。2019年5月,他受聘德克萨斯大学医学部韦尔奇讲席教授。


2012年,迈克尔·希茨、詹姆斯·斯普迪赫和罗纳德·韦尔凭借他们对于分子动力蛋白的工作被授予拉斯克基础医学奖。

 

参考资料

[1] Sheetz, M. P. (2012). Following nature'schallenges. Nature medicine, 18(10), 1483.

[2] https://prabook.com/web/david_patrick.sheetz/55794

[3] https://www.ascb.org/wp-content/uploads/2009/04/Michael_sheetz.pdf

[4] Sheetz, M. P., & Chan, S. I. (1972). Effectof sonication on the structure of lecithin bilayers. Biochemistry, 11(24),4573-4581.

[5] Sheetz, M. P., & Chan, S. I. (1972). Protonmagnetic resonance studies of whole human erythrocyte membranes. Biochemistry,11(4), 548-555.

[6] Glaser, M., Simpkins, H., Singer, S. J., Sheetz,M., & Chan, S. I. (1970). On the interactions of lipids and proteins in thered blood cell membrane. Proceedings of the National Academy of Sciences,65(3), 721-728.

[7] Sheetz, M. P., & Singer, S. J. (1974).Biological membranes as bilayer couples. A molecular mechanism ofdrug-erythrocyte interactions. Proceedings of the National Academy of Sciences,71(11), 4457-4461.

[8] Sheetz, M. P., Schindler, M., & Koppel, D.E. (1980). Lateral mobility of integral membrane proteins is increased inspherocytic erythrocytes. Nature, 285(5765), 510.

[9] Huxley, H. E. (1969). The mechanism of muscularcontraction. Science, 164(3886), 1356-1366.

[10] Huxley, A. F., & Niedergerke, R. (1954).Structural changes in muscle during contraction: interference microscopy ofliving muscle fibres. Nature, 173(4412), 971.

[11] Huxley, H., & Hanson, J. (1954). Changes inthe cross-striations of muscle during contraction and stretch and theirstructural interpretation. Nature, 173 (441) 973

[12] Spudich, J. A., Huxley, H. E., & Finch, J.T. (1972). Regulation of skeletal muscle contraction: II. Structural studies ofthe interaction of the tropomyosin-troponin complex with actin. Journal ofmolecular biology, 72(3), 619-632.

[13] Spudich, J. A. (2012). One path tounderstanding energy transduction in biological systems. Nature medicine,18(10), 1478.

[14] Kersey, Y. M., Hepler, P. K., Palevitz, B. A.,& Wessells, N. K. (1976). Polarity of actin filaments in Characean algae.Proceedings of the National Academy of Sciences, 73(1), 165-167.

[15] Clarke, M., & Spudich, J. A. (1974).Biochemical and structural studies of actomyosin-like proteins from non-musclecells: isolation and characterization of myosin from amoebae of Dictyostelium discoideum.Journal of molecular biology, 86(2), 209-222.

[16] Sheetz, M. P., & Spudich, J. A. (1983).Movement of myosin-coated fluorescent beads on actin cables in vitro. Nature,303(5912), 31.

[17] Vale, R. D., De Lean, A. N. D. R. E.,Lefkowitz, R. J., & Stadel, J. M. (1982). Regulation of insulin receptorsin frog erythrocytes by insulin and concanavalin A. Mol. Pharmacol, 22,619-626.

[18] Vale, R. D., & Shooter, E. M. (1983).Conversion of nerve growth factor-receptor complexes to a slowly dissociating,Triton X-100 insoluble state by anti nerve growth factor antibodies.Biochemistry, 22(21), 5022-5028.

[19] Brady, S. T., Lasek, R. J., & Allen, R. D.(1982). Fast axonal transport in extruded axoplasm from squid giant axon.Science, 218(4577), 1129-1131.

[20] Allen, R. D., Metuzals, J., Tasaki, I., Brady,S. T., & Gilbert, S. P. (1982). Fast axonal transport in squid giant axon.Science, 218(4577), 1127-1129.

[21] Inoue, S. 1981. Video image processing greatlyenhances contrast, quality and speed in polarizationbased microscopy. J. CellBiol. 89:346–356.

[22] Baraff, L. S., & Loughlin, T. R. (2000).Trends and potential interactions between pinnipeds and fisheries of NewEngland and the US West Coast. Marine Fisheries Review, 62(4), 1-39.

[23] Adams, R. J., & Bray, D. (1983). Rapidtransport of foreign particles microinjected into crab axons. Nature,303(5919), 718.

[24] https://www.ibiology.org/cell-biology/kinesin/.

[25] Schnapp, B. J., Vale, R. D., Sheetz, M. P.,& Reese, T. S. (1985). Single microtubules from squid axoplasm supportbidirectional movement of organelles. Cell, 40(2), 455-462.

[26] Vale, R. D. (2012). How lucky can one be? Aperspective from a young scientist at the right place at the right time. Naturemedicine, 18(10), 1486.

[27] Vale, R. D., Schnapp, B. J., Reese, T. S.,& Sheetz, M. P. (1985). Organelle, bead, and microtubule translocationspromoted by soluble factors from the squid giant axon. Cell, 40(3), 559-569.

[28] Vale, R. D., Reese, T. S., & Sheetz, M. P.(1985). Identification of a novel force-generating protein, kinesin, involvedin microtubule-based motility. Cell, 42(1), 39-50.

[29] Kull, F.J., Sablin, P., Lau, R., Fletterick,R.J. and Vale, R.D. (1996) Crystal structure of the kinesin motor domainreveals a structural similarity to myosin. Nature 380: 550-555.

[30] Miki, H., Setou, M., Kaneshiro, K., &Hirokawa, N. (2001). All kinesin superfamily protein, KIF, genes in mouse andhuman. Proceedings of the National Academy of Sciences, 98(13), 7004-7011.

[31] Sheetz, M.P., Sable, J.E. & Dobereiner,H.G. Continuous membrane-cytoskeleton adhesion requires continuousaccommodation to lipid and cytoskeleton dynamics. Annu. Rev. Biophys. Biomol.Struct. 35, 417–434 10.1146/annurev.biophys.35.040405.102017 (2006).

[32] Vogel, V. & Sheetz, M.P. Cell fateregulation by coupling mechanical cycles to biochemical signaling pathways.Curr. Opin. Cell Biol. 21, 38–46 10.1016/j. ceb.2009.01.002 (2009).

[33] Ghassemi, S. et al. Cells test substrate rigidityby local contractions on submicrometer pillars. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 109,5328–5333 10.1073/ pnas.1119886109 (2012).

[34] Wolfenson, H., Yang, B., & Sheetz, M. P.(2019). Steps in mechanotransduction pathways that control cell morphology.Annual review of physiology, 81, 585-605.

参与讨论
0 条评论
评论
暂无评论内容
订阅Newsletter

我们会定期将电子期刊发送到您的邮箱

GO